2 濃縮紅細胞的製備
可在全血有效保存期內的任何時間移出血漿，根據移出血漿量不同，紅細胞比容可爲 70％～90％，但以70％的紅細胞爲佳，便於輸注。
2.1 製備方法
2.1.1 離心法
(2)將血袋連同轉移袋一起，用塑料氣包或其他方法夾持血袋，使血袋上部在離心杯中鼓起，處於直立的位置。
(3)將平衡好的成對離心杯，準確地掛在離心機轉頭兩個對稱的位置上蓋好離心機內外蓋，5000g離心7min，溫度4℃±2℃，使紅細胞快速下沉。如離心機性能有限，不可能達到以上離心力時，可根據情況，相應延長離心時間。
(4)將血袋放在血漿擠壓器兩夾板之間，去掉血袋與分漿管之間的堵頭，讓血漿流入轉移袋內。
(5)熱合封口，並切斷連接血袋和轉移袋之間的分漿管，血袋中留下部分即爲濃縮紅細胞。
2.1.2 自然沉降法
將血袋垂直吊掛於4℃±2℃冰箱內，使紅細胞自然下沉1～3d，或將血袋呈70°～80°角立於冰箱，需用時，用一次性分漿器分出血漿，製得濃縮紅細胞。
2.2 保存
3 洗滌紅細胞的製備
一般用生理鹽水反覆洗滌3～6次。經洗滌的紅細胞，除白細胞和血小板減少外，血漿蛋白也極少，紅細胞中殘存的血漿蛋白含量約爲原總蛋白的1％以下。
3.1 製備方法
3.1.1 手工洗滌法
必須在無菌室的超淨臺上操作。目前國家尚未生產統一的一次性洗滌器，故洗滌方法也不盡相同，在此僅介紹中國醫學科學院輸血研究所採用多節洗滌器 (包括1個三通接頭和多個二通接頭與多條塑料管連接而成)的洗滌方法。
(2)以1160g離心8min溫度20℃。
(3)分出上層血漿至2號轉移袋，將白膜層和白膜層下1.0～1.5cm厚的紅細胞移至 1號轉移袋，血袋中留下濃縮紅細胞。
(4)將濃縮紅細胞袋與多節洗滌器三通接頭一端連接，1000ml或500ml袋，或 500ml瓶生理鹽水和1000ml空塑料袋分別與三通接頭兩端連接。
(5)鬆開鹽水袋塑料管上的止血鉗，向血袋內灌入生理鹽水250-300ml。
(6)取下血袋，熱合封閉管口，充分混勻後再以5000g離心6min，溫度4℃±2℃。
(7)將血袋再次連接到多節洗滌器第2個二通接頭一端，鬆開空袋塑料管上的止血鉗，將洗滌液及剩餘的白膜層儘量擠入塑料袋內。
(8)重複步驟(5)-(7)，反覆洗滌紅細胞 3～6次，至最後1次擠出洗滌液及剩餘白膜後，再注入約等於紅細胞1/2的生理鹽水，配製約爲70％比容的紅細胞懸液。
3.1.2 機器洗滌法
3.2 保存
4 代漿紅細胞的製備
將全血離心並移除絕大部分(90％以上)血漿後，將代血漿(大多含羥乙基澱粉和葡萄糖)或晶體鹽保存液加入紅細胞內，代替移出的血漿，製成代漿紅細胞或晶體鹽紅細胞懸液。
4.1 製備方法
2．4℃±2℃條件下，以5000g離心 7min。
4．再將另一轉移袋內代血漿保存液加入紅細胞內，其用量約等於原血漿。
6．熱合封口並切斷分漿管，製成代漿紅細胞。
4.2 附
如用單袋採血，離心分出卜層血漿後，可通過連接管灌入代血漿保存液。製備的代漿紅細胞在 24h內輸注。
4.3 保存
保存期因代血漿保存液的種類而定，如代血漿大多數含有羥乙基澱粉和葡萄糖等，於4℃±2℃保存期爲14-21d。SAG(氯化鈉、腺嘌呤和葡萄糖)保存液和SAGS保存液(氯化鈉、腺嘌呤、葡萄糖和蔗糖)，添加到濃縮紅細胞中，其有效保存期分別爲35d和 42～49d。
5 去白細胞的紅細胞製備
5.1 製備方法
從全血或壓積紅細胞內去除白細胞的方法較多，其去除效果各不相同，但任何一種方法都不可能把白細胞全部除去。一般認爲去除70％以上即可避免因白細胞凝集所致的發熱反應。
5.1.1 離心法
是一種簡單而較爲有效的製備方法。
(1) 正位離心法：①用三聯塑料袋採集全血。②以1160g離心8min，溫度控制在20℃。③分出上層血漿至2號轉移袋內。④擠出白膜層及靠近白膜層1.0-1.5cm厚的紅細胞至1號轉移袋內。⑤爲提高白細胞除去率，可再將2號轉移袋內的血漿返回血袋。⑥充分混勻後重復步驟②～④。⑦以原血漿配製成70％比容的去白細胞的紅細胞。
(2)倒置離心法：①用特製三聯塑料袋採集全血。②將血袋倒置(底部朝上)離心，離心速度、時間和溫度同正位離心法。③將血袋放在倒置擠壓器上，夾住2號轉移袋通路，並打開1號袋通路，使血袋下部少含白細胞的紅細胞流入1號轉移袋，當白膜層離血袋下口約剩4cm時，適當減慢血流速度，以免形成旋渦而影響白細胞除去效果。④當白膜層離血袋下口只有2cm時，夾住通向1號轉移袋通路，打開2號轉移袋通路，讓白膜流入2號轉移袋。此時可用手指推擠白膜，儘量使更多的白膜擠入2號轉移袋內，直至連接管呈現粉紅色時，夾住通向2號轉移袋的塑料管。⑤從擠壓板上取下血袋，將去除白細胞的紅細胞返回原血袋內。⑥充分混勻後重復步驟②-④，以提高白細胞去除率。⑦將血漿與紅細胞一起正位離心，從血袋分出部分血漿置於紅細胞袋內，配製成70％比容的去白細胞的紅細胞。
5.1.2 過濾法
使血液通過特製過濾器，利用吸附或阻擋白細胞等原理，將白細胞除去，而製得去白細胞的紅細胞。過濾法簡單、方便，效果又好，它將有效地代替其他方法。
(1)尼龍纖維過濾器：根據尼龍纖維在鈣離子存在下，能選擇性地吸附白細胞這一特性，使血液通過尼龍纖維過濾器，將白細胞吸附，而獲得去白細胞的紅細胞。方法爲：①用肝素抗凝採集全血1個單位，過濾前不要將此血冷卻。②取出事先放入溫箱加溫至37℃的濾器，再用37℃鹽水灌注。③將血袋和濾器連接，於1h內將血液進行過濾，即獲得紅細胞。
(2)棉花纖維過濾器：可用於保存期內任何抗凝血。據文獻報道，接近貯存末期的血液去除白細胞的效果更好。一般過濾後的血液可除去95％以上白細胞，並保留95％以上紅細胞。
(3)微聚物過濾器：全血以5000g離心 7min後，置入4℃±2℃冰箱保存，於輸血前將血液通過1個孔徑爲20-40μm的微聚物過濾器進行過濾。
5.1.3 沉降法
使用沉降劑，如大分子右旋糖酐(分子量爲15萬～20萬)或羥乙基澱粉 (分子量爲30萬-40萬)或羧甲基澱粉鈉，促使紅細胞快速下沉，而白細胞仍保留在血漿中，分出上層富含白細胞、血小板血漿，下層即爲去白細胞的紅細胞。所得紅細胞可用生理鹽水配製70％比容的紅細胞懸液。本法技術簡單，操作時間短，不需昂貴設備，效果好；缺點是沉降劑分子量大，抗原性強，易引起變態反應。若使用低分子或中分子右旋糖酐或羥乙基澱粉，則沉降效果差。
5.1.4 洗滌法
6 濃縮粒(白)細胞的製備
6.1 製備方法
臨牀上輸注白細胞主要指粒細胞，其製備方法主要利用離心、過濾、沉澱等原理。
1．血細胞分離機單採粒細胞效果較好 (製備方法見有關章節)。
2．沉降法單採粒細胞 (1)將全血採入內含大分子羥乙基澱粉及抗凝劑的二聯血袋中。 (2)血袋垂直吊掛，靜置15min。 (3)分出上層富含白細胞、血小板血漿至轉移袋。 (4)以1220g離心5min，使白細胞下沉而血小板仍保留在上層血漿中。 (5)將上層的富血小板血漿分至紅細胞袋內，回輸給獻血者，留下的即爲濃縮粒(白)細胞。
如上反覆循環4次，加工血液1600ml，同時並用皮質類固醇激素動員，可從1個獻血者獲得1×1010個以上的粒細胞，供患者1次輸注。此法特別適用於嬰兒，因只需要1袋濃縮粒細胞(400ml血液)即可提供足夠的量。
3．離心擠白膜法 (1)用三聯塑料血袋採集全血。 (2)以1160g離心8min，溫度20℃。(3)分出上層血漿至2號轉移袋，留下約 15～20ml血漿。(4)將剩餘血漿連同白膜層及靠近白膜層下1.5-2.0cm厚的紅細胞一起擠入1號轉移袋，即爲濃縮白(粒)細胞。總量爲35～45ml，可獲得全血中60％以上的粒(白)細胞，其總數約爲1×109個。
本法的缺點是：①粒(白)細胞製得率及總數偏低。②每次輸注多個獻血者粒(白)細胞，易產生白細胞凝集素及HLA抗體，影響治療效果或出現輸血不良反應。③本製品含有較多的淋巴細胞，可能導致移植物抗宿主病。
6.2 保存
一般採用室溫(22℃±2℃)、不搖盪的方法保存濃縮粒(白)細胞，時間不超過8h。因此，粒(白)細胞製備後應儘快輸注，以免影響療效。
7 富含血小板血漿的製備
血小板是3種血細胞中最小、最輕的一種，比重約爲1.032。由於血小板比白細胞容易從全血中分離出來，因此血小板的輸注開展較早。分離方法可以從1袋全血中提取，也可用血細胞分離機從單個獻血者採集較大量的血小板，供給臨牀輸注。
(2)於4～6h內使用離心(1220g 離心5min)，溫度爲22℃±2℃，使紅細胞、白細胞基本下沉，而血小板因比重較輕，大部分仍保留在血漿中。
8 濃縮血小板的製備
8.1 製備方法
2．將富含血小板血漿離心(4650g離心 6min或2980g離心20min)，溫度22℃±2℃，使血小板下沉。
3．分出上層少血小板血漿，留下20～30ml血漿於血小板中，即爲濃縮血小板，約可獲得全血中60％以上的血小板。
4．由於2次離心，製備的濃縮血小板中血小板聚集成團，必須先放在22℃±2℃環境下靜置1-2h，待其自然解聚後，輕輕搖動血袋，使其成均勻混懸液後方可輸注。
8.2 製備時注意點
1．採血順利，無凝塊。
2．從全血採出到製備全過程，包括離心溫度，均要求在22℃+2℃環境中進行。即使不立即製備，也不要將全血放入冰箱。
3．製備時動作一定要輕，避免較強的物理刺激，而造成血小板不可逆性聚集，影響輸注效果。
4．影響血小板得率的關鍵是第1次離心條件，包括離心速度和時間。各單位可根據所使用離心機的性能，選用最佳離心條件。
6．避免過多的白細胞、紅細胞，特別是白細胞的污染，因混入大量的紅、白細胞，可使血小板保存期間pH下降，更嚴重的是可使患者產生白細胞凝集素或HLA抗體，影響血小板治療效果，故對血小板製品中的白細胞污染量應嚴加控制。
7．肉眼觀察應無凝集現象。
8.3 保存
以22℃±2℃振盪保存爲佳。天津醫用高分子廠生產的塑料袋可保存3d，但需增加血漿量至50-70ml。一般塑料袋只能保存24h。適合血小板保存的pH爲6.0～7.4。
9 新鮮液體血漿的製備
新鮮液體血漿含有全部凝血因子，包括第V和第Ⅷ因子，適合於沒有條件冰凍保存血漿的醫療單位。
9.1 製備方法
11 普通液體血漿的製備
11.1 製備方法
2．全血在保存期間或過期5d內自然沉降或離心後分出上層血漿，即爲普通液體血漿。
11.2 保存
普通液體血漿於4℃±2℃冰箱暫時保存，但必須於24h內輸用。由於製備方法是非密閉性的，有可能發生細菌污染，故4℃±2℃冰箱保存，仍可能有嗜冷細菌生長。
13 冷沉澱的製備
冷沉澱主要含有第Ⅷ因子、纖維蛋白原(第1因子)以及纖維結合蛋白等成分。
13.1 製備方法
3．製備冷沉澱前將新鮮冰凍血漿置於 4℃±2℃冰箱(約14h)或冰水中融化。
4．待其基本融化，仍留有少量小冰塊時進行離心(5000g離心10min)，溫度控制在 4℃±2℃，使冷沉澱下沉。
5．儘快分出上層少冷沉澱血漿，留下約 15-25ml血漿於冷沉澱中。
6．可繼續置於-30℃以下低溫冰箱保存備用，或以37℃水浴中輕輕搖動融化後立即供臨牀輸注。
7．臨牀輸用冷沉澱前，將多袋冷沉澱融化後，揉搓袋壁，使冷沉澱分散到15～25ml血漿中；在無菌條件下，用一次性注射器把每個袋的內容物混合到一個袋中，最後用20-30ml生理鹽水沖洗各袋；將此沖洗後的冷沉澱生理鹽水混懸液注入到最終混合的冷沉澱袋中，熱合封口，即可輸注。
13.2 注意事項
第Ⅷ因子是一種很容易喪失活性的凝血因子，爲了獲得高活性的第Ⅷ因子，以取得最大療效，在製備冷沉澱過程中應注意以下事項：
1．要求採血順利，200～400ml採血時血液應在3-6min內採完，無凝塊。
2．採用兩次離心分離血漿，除去新鮮血漿中殘留的細胞成分；因血漿冰凍時可使細胞破裂，釋放凝血活性物質，影響第Ⅷ因子穩定性。
3．新鮮血漿從開始冰凍起在1h內應變成固態，溫度可維持在-65℃以下，或風冷式冰箱和機械冰箱或乾冰浴中(95％乙醇和碎乾冰浴中，可在15min內完成冰凍)。血漿袋在浸泡液體之前應用塑料套包裝好，保持其袋管乾燥。
4．每400ml全血製備的冷沉澱，要求第Ⅷ因子含量在80U以上，纖維蛋白原含量在220mg以上。