生物製品化學規定規程

1 拼音

shēng wù zhì pǐn huà xué guī dìng guī chéng

2 註解

本規程載入的化學檢定項目，如採用其他方法測定，其結果與本規程所列應無顯着差異。如遇製品質量存在疑問時，其最後判定應以本規程所列方法測定結果爲準。

標準液的配製與標定方法參看新版《中國藥典》。

3 PH值測定（電位法）

1　儀器校準（定位）用標準緩衝溶液

應使用分析純標準緩衝物質配製。

1.1　0.05mol/L鄰苯二甲酸氫鉀溶液

稱取於115±5℃乾燥2～3小時的鄰苯二甲酸氫鉀（KHC8H4O4）10.12±0.01g，溶於蒸餾水，並稀釋至1000ml。

1.20.025mol/L磷酸氫二鈉和0.025mol/L磷酸二氫鉀混合溶液

分別稱取在115±5℃乾燥2～3小時的磷酸氫二鈉（Na2HPO4）3.53±0.01g和磷酸二氫鉀（KH2PO4）3.39±0.01g，溶於預先煮沸過15～30分鐘並迅速冷卻的蒸餾水中，並稀釋至1000ml。

1.30.01mol/L硼砂溶液

稱取硼砂（Na2B4O7·10H2O）3.80±0.01g（注意：不能烘！），溶於預先煮沸過15～30分鐘並迅速冷卻的蒸餾水中，並稀釋至1000ml。置聚乙烯塑料瓶中密閉保存。

標準緩衝溶液於0～50℃的標準pH值

2　操作

使用玻璃電極酸度計測定，操作方法按儀器介紹進行。用兩種標準緩衝溶液校正或覈對，相差不得超過0.05。

4 固體總量測定

甲、105℃幹烤法

1　操作

精確量取一定體積樣品於乾燥至恆重的扁稱量瓶中，置105℃烤箱中烘至恆重。

2　計算

烘乾後樣品重量

樣品固體總量%（g/ml）=　──────────×100

                            樣品ml數

乙、50℃幹烤法

1　操作

精確量取1mlA羣腦膜炎球菌多糖菌苗半成品原液於已乾燥至恆重的稱量瓶（2×2.5cm）中，置50℃乾燥箱中，乾燥至恆重。

2　計算

同105℃幹烤法。

5 半微量定氮法

1　試劑

1.1　硫酸

化學純，比重1.84。

1.2　消化劑

硫酸銅（CuSO4·5H2O）1份與硫酸鉀（K2SO4）10份共同研細混勻即成。

1.3　12.5mol/L氫氧化鈉液

取氫氧化鈉500g，加蒸餾水至1000ml，搖勻。

1.4　2%硼酸吸收液

硼酸20g加蒸餾水使溶解成1000ml，加混合指標劑10ml，搖勻。

1.5　混合指示劑

0.2%（g/ml）溴甲酚綠酒精溶液5份與0.1%（g/ml）甲基紅酒精溶液2份混合配成。

1.6　標準0.01mol/L鹽酸或0.005mol/L硫酸溶液。

2　操作

2.1　消化

準確量取一定體積樣品（含氮量在1～2mg左右）於凱氏定氮瓶中，加消化劑約0.3g，濃硫酸1.0ml進行消化，至澄明藍綠色，繼續消化約60分鐘，同時做空白。

2.2　蒸餾與滴定

取10ml硼酸吸收液於100ml三角瓶內，將凱氏蒸餾器冷凝管末端浸入硼酸吸收液內，將消化好的樣品移入凱氏蒸餾器內，用蒸餾水洗定氮瓶3～4次，洗液亦移入蒸餾器內，再加5ml　12.5mol/L氫氧化鈉溶液，然後進行蒸餾，待接收液總體積約35～50ml,將冷凝管末端取出液麪，讓蒸汽沖洗約1分鐘，再用少量蒸餾水沖洗冷凝管末端，接收液用標準0.01mol/L鹽酸或0.005mol/L硫酸進行滴定，至溶液顯著變色。

3　計算

（樣品滴定數–　空白滴定數）×標準鹽酸mol/L×14

樣品總氮含量(mg/ml)=────────────────────────

                          樣品ml數

附註

1.蒸餾前應蒸洗蒸餾器15分鐘。

2.蒸汽發生瓶內應加數滴硫酸及甲基紅指示劑至呈明顯紅色。

6 蛋白質含量測定

甲、鎢酸沉澱法

1　試劑

1.110%鎢酸鈉溶液

取鎢酸鈉10g，加蒸餾水使溶解成100ml。

1.2　0.33mol/L硫酸溶液

量取化學純硫酸1.86ml，緩緩注入適量的蒸餾水中，待冷加水稀釋至100ml。

1.30.145mol/L氯化鈉溶液

取氯化鈉9g，加蒸餾水使溶解成1000ml。

2　操作

2.1　鎢酸除蛋白質

精確量取樣品2ml加蒸餾水14ml，加10%鎢酸鈉2ml，0.33mol/L硫酸2ml，搖勻，靜置30分鐘過濾。

2.2　精確量取樣品1ml，用0.145mol/L氯化鈉溶液準確稀釋至每ml含氮量1mg左右。

2.3　精確量取稀釋液1ml及除蛋白質濾液5ml，分別移入凱氏定氮瓶中，用半微量定氮法測定樣品的總氮及非蛋白氮含量。

3　計算

樣品總氮含量(mg/ml)=（樣品滴定數-空白滴定數）×標準鹽酸mol/L×14×稀釋倍數

樣品非蛋白氮含量(mg/ml)=（樣品滴定數-空白滴定數）×標準鹽酸mol/L×14×12

樣品蛋白質含量(g/ml)=（總氮-非蛋白氮）×6.25×1/10

附註

1.樣品蛋白質含量如超過10%(g/ml)，除蛋白質時應適當加大樣品稀釋倍數，10%鎢酸鈉及0.33mol/L硫酸用量相應地按比例增加，使溶液鎢酸濃度仍保持1%。

2.總氮與非蛋白氮可用同一空白。

乙、三氯醋酸沉澱法

1　2%三氯醋酸溶液

取三氯醋酸12g，加蒸餾水溶解至100ml。

2　操作

精確量取一定體積的樣品（含蛋白質6～12mg左右，於10ml尖底離心管中，加等體積的12%三氯醋酸混勻，放置半小時後3000r/min離心30分鐘，傾淨上清，沉澱用蒸餾水約3ml（分數次）洗入凱氏燒瓶，按半數量定氮法測定氮含量。

3　計算

（樣品滴定數–　空白滴定數）×標準鹽酸mol/L×14

樣品蛋白質含量(mg/ml)=─────────────────────×6.25

                        樣品ml數

丙、微量法（Lowry法）

1.試劑

1.1　4%碳酸鈉溶液

取4g碳酸鈉，加蒸餾水溶解成100ml。

1.2　0.2mol/L氫氧化鈉溶液

取0.8g氫氧化鈉加蒸餾水，溶解成100ml。

1.3　0.04mol/L硫酸銅溶液

取1gCuSO4·5H2O加蒸餾水溶解成100ml。

1.42%酒石酸鉀（或0.1mol/L酒石酸鈉）

取2g酒石酸鉀（或酒石酸鈉），加蒸餾水溶解成100ml。

1.5　鹼性銅液

臨用前取試劑1.1和1.2各25ml，試劑1.3和1.3各0.5ml混勻配製而成。

1.6　酚試劑

稱取100g鎢酸鈉(Na2WO4·2H2O),25g鉬酸鈉(Na2MoO4·2H2O)，置1500ml燒瓶中，加入700ml蒸餾水，50ml　85%磷酸及100ml濃鹽酸，上聯迴流管（使用木塞或錫紙包裹的橡皮塞）微沸加流10小時，取下回流管，加入150g硫酸鋰，50ml蒸餾水，幾滴溴液，煮沸約15分鐘，驅除過量的溴。冷卻，加蒸餾水稀釋至1000ml，過濾，爲酚試劑貯備液。

酚試劑貯備液經標準氫氧化鈉液滴定，測定酸濃度，而後用蒸餾水稀釋至相當1mol/L鹽酸濃度，即爲酚試劑。

1.7　標準蛋白質溶液

取牛血清白蛋白標準品（由檢定所統一標定發給），準確稀釋至1mg/ml(含0.02%NaN3)，爲標準蛋白質貯備液。精確量取標準蛋白質貯備液2.5ml於25ml容量瓶中，用含0.02%NaN3的蒸餾水稀釋至刻度，爲標準蛋白質溶液（100μg/ml）。

2　操作

2.1　樣品

精確量取一定體積樣品（含蛋白質50μg左右）於試管中，加5ml鹼性銅液，混勻，於室溫放置10分鐘，快速加入0.5ml酚試劑，搖勻，於室溫放置30分鐘，用650nm波長或紅色濾光片比色（呈色後，如發現混濁，經3000r/min離心15分鐘後再比色）。

2.2　標準曲線

精確量取標準蛋白質溶液（100μg/ml）0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0ml，分別置於試管中，加蒸餾水補至1ml，其餘操作同樣品，可得一標準曲線。

3　計算

從標準曲線查出樣品相當標準蛋白質溶液之ml數A；

A×0.01%

樣品蛋白質含量（g/ml）=　────────

                        樣品ml數

附註

檢測A羣腦膜炎多糖抗原半成品原液可取1ml（含抗原3～10mg）。

7 硫酸銨含量測定

1　試劑

1.1　1mol/L氫氧化鈉液

取化學純氫氧化鈉20g，加蒸餾水溶解成500ml。

2　操作

2.1　除蛋白質

方法同蛋白質含量測定。

2.2　蒸餾

精確量取除蛋白質濾液10ml於凱氏蒸餾器內，加1mol/L氫氧化鈉1ml，加少量蒸餾水，按半微量定氮法進行蒸餾、滴定。

3　計算

樣品硫酸銨含量%（g/ml）=（樣品滴定數-空白滴定數）×標準鹽酸mol/L×14×4.715×1/10

8 氯化鈉含量測定

1　試劑

1.1　0.1mol/L硝酸銀溶液

取硝酸銀17g，加蒸餾水溶解成1000ml。

1.2　標準0.05mol/L硫氰酸銨溶液

1.3　5.5mol/L硝酸

1.48%　硫酸鐵銨指示液

取8g硫酸鐵銨，加蒸餾水溶解成100ml。

1.5　飽和高錳酸鉀

取高錳酸鉀6.5g，加蒸餾水溶解成100ml。

2　操作

2.1　精確吸取樣品1ml，準確加入0.1mol/L　硝酸銀溶液5ml　，混勻（蛋白質含量高者加2ml飽和高錳酸鉀），加10ml硝酸　(5.5mol/L)　，直接加熱消化至溶液澄清爲止。待冷，加蒸餾水50ml,8%硫酸鐵銨指示液1ml,用標準　0.05mol/L硫氰酸銨溶液滴定至溶液呈淡棕紅色，振搖勻仍不退色，即爲終點。

2.2　空白試驗

準確量陬0.1mol/L硝酸銀溶液　5ml，加硝酸　(5.5mol/L)10ml，可不消化，其餘操作同樣品。

3　計算

樣品氯化鈉含量%(g/ml)＝（空白滴定數－樣品滴定數）×硫氰酸銨mol/L×5.845

9 鈉離子含量測定（火焰亮度法）

1　試劑

標準鈉溶液：精確稱取於110℃乾燥至恆重的NaCl2.9227g,用雙蒸水溶解並稀釋至1000ml,　爲500mmol/L標準鈉溶液。

2　操作

2.1　樣品

精確量取樣品0.5ml於　50ml容量瓶中，用蒸餾水稀釋至刻度，於火焰亮度計，589nm波長（或黃色濾光片）測其透光度。

2.2　標準曲線

精確量取標準鈉溶液0.9、1.1、1.3、1.5、1.7ml　於50ml　容量瓶中，用蒸餾水稀釋至刻度，鈉含量分別爲0.9、1.1、1.3、1.5、1.7mmol/L，其餘操作同樣品。

3　計算

由標準曲線上查出稀釋後樣品鈉含量爲a　mmol/L　。

樣品鈉含量(mmol/L)=A×100

10 鉀離子含量測定（火焰亮度法）

1　試劑

標準鉀溶液：精確稱取於110℃乾燥至恆重的　KCl　0.3728g，用雙蒸水溶解並稀釋至500ml　，爲10mmol/L標準鉀溶液。

2　操作

2.1　樣品

精確量取樣品2ml　於50ml容量瓶中，用蒸餾水稀釋至刻度，於火焰亮度計769nm波長（或紅色濾光片）測其透光度。

2.2　標準曲線

精確量取標準鉀溶液0.15、0.30、0.45、0.60、0.75ml　於50ml容量瓶中，用蒸餾水稀釋至刻度，鉀含量分別爲0.03、0.06、0.09、0.12、0.15mmol/L，其餘操作同樣品。

3　計算

由標準曲線上查出稀釋後樣品鉀含量爲Ammol/L　。

樣品鉀含量(mmol/L)=A×25

11 枸櫞酸離子含量測定

1　試劑

1.1　標準枸櫞酸鈉濃溶液

精確稱取枸櫞酸鈉(Na3C6H標準5O7·2H2O)0.5882g,加蒸餾水溶解，並準確稀釋至100ml　，爲20mmol/L　枸櫞酸鈉液。

1.2　標準枸櫞酸鈉溶液

精密量取標準枸櫞酸鈉濃溶液5ml，用5%三氯醋酸準確稀釋至50ml，爲2mmol/L枸櫞酸鈉標準液。

1.310%三氯醋酸：稱取三氯醋酸10g，用蒸餾水稀釋至100ml。

1.45%三氯醋酸：稱取三氯醋酸5g，用蒸餾水稀釋至100ml。

1.5　砒啶(A·R)。

1.6　醋酸酐(A·R)。

2　操作

2.1　樣品

精確量取0.5ml樣品，加　4.5ml　蒸餾水，加5ml10%三氯醋酸，混勻，置60℃水浴　5分鐘，離心去沉澱。精確量取1ml上清液於25ml玻塞試管中，加1.3ml吡啶，混勻，加5.7ml　醋酸酐，立即混勻並置於31℃水浴，準確培育35分鐘後，於　425nm波長下測　OD值，同時做空白試驗：取1ml　5%三氯醋酸代替1ml去蛋白後樣品上清液，其餘操作同樣品。

2.2　標準曲線

精確量取標準枸櫞酸鈉溶液0.0、0.25、0.50、0.75、1.0ml,分別加5%三氯醋酸1.0、0.75、0.5、0.25、0.0ml　（其相應的枸櫞酸鈉離子含量爲0、0.5、1.0、1.5、2.0mmol/l　），其餘操作從加1.3ml吡啶開始同樣品。可得一標準曲線。

3　計算

由標準曲線查得樣品稀釋液相當標準枸櫞酸離子Ammol/L。

樣品枸櫞酸離子含量(mmol/L)=A×20

12 亞硫酸氫鈉含量測定

1　試劑

1.1　0.1mmol/L碘液

1.2　標準0.1mmol/L硫代硫酸鈉液

1.3　0.5%澱粉指示劑

取可溶性澱粉0.5g，加蒸餾水　5ml攪勻後，緩緩傾入100ml沸蒸餾水中，隨加隨攪拌，煮沸，至適成稀薄的半透明液，放置使沉澱，傾取上層清液（配製時可加適當的防腐劑）。

1.4　6mol/L鹽酸

2　操作

精確量取腦炎疫苗5~　10ml　或一定體積亞硫酸氫鈉液（含亞硫酸氫鈉2.5mg左右）於碘瓶中，精確加入0.1mol/L碘液20ml，放置　5分鐘，沿瓶壁加6　mol/L鹽酸2ml，搖勻，用標準0.1　mol/L硫代硫酸鈉液滴定至溶液呈淺黃色，加0.5%　澱粉指示劑約0.5ml，滴定至藍色消失，同時做空白。

(空白滴定數-樣品滴定數)×硫代硫酸鈉mol/L×5.203

樣品亞硫酸氫鈉含量%（g/ml）=─────────────────────

                         樣品ml數

附註

如測定樣品爲亞硫酸氫鈉液，只需根據其濃度和取樣量，在測定時適當增加0.1mol/L碘液的用量即可。

13 氫氧化鋁（或磷酸鋁）含量測定

甲、滴定法

1　試劑

1.1　0.05　mol/L　EDTA標準液。

1.2　標準0.025　mol/L鋅液。

取標準0.05mol/L鋅液稀釋。

1.3　Ph4.5醋酸銨緩衝液

稱取醋酸銨77.1g，溶於適量的蒸餾水中，加冰醋酸58ml,　稀釋至1000ml。

1.40.1%二甲酚橙指示劑。

1.5　0.95　mol/L　磷酸

量取磷酸6ml，稀釋至　100ml。

2　操作

精確量取吸附精製類毒素適量（含鋁1～10mg），置　250ml三角瓶中，加　0.95mol/L　磷酸1.5ml，使完全溶解。必要時於水浴加溫（難於溶解時尚可適當增加磷酸量）。加0.05　mol/L　EDTA10ml,　Ph4.5　醋酸銨緩衝液10ml，於沸水浴中加熱10　分鐘，冷至室溫加0.1%二甲酚橙　1ml，用　0.025　mol/L鋅標準液進行滴定，當溶液由亮黃轉變爲橙色，即爲終點。同時做空白試驗。

3　計算

(空白滴定數-樣品滴定數)×標準鋅液mol/L×78.01
樣品氫氧化鋁含量(mg/ml)=───────────────────────
                       樣品ml數
                       (空白滴定數-樣品滴定數)　×標準鋅液mol/L×121.95
樣品磷酸鋁含量(mg/ml)=　────────────────────────
                       樣品ml數
                    (空白滴定數-樣品滴定數)　×標準鋅液mol/L×26.98

樣品鋁含量(mg/ml)=　────────────────────────

                    樣品ml數

乙、比色法

1　試劑

1.1　0.95mol/L磷酸

取磷酸6ml　，稀釋至100ml。

1.2　1.5mol/L鹽酸

1.31.2mol/L鹽酸

1.4　0.2%鋁試劑溶液

1.51.3mol/L醋酸銨溶液

1.6　標準鋁溶液

精確稱取鉀明礬[KAl(SO4)2·12H2O]0.3518g,　加1.5mol/L　HCl　8ml　，加蒸餾水到1000ml，爲含鋁20μg/ml的標準液。

2　操作

2.1　樣品

精密量取吸附製品　1ml　(含鋁0.5～1mg)於50ml　容量瓶中，加0.95mol/L　磷酸1.5ml,使完全溶解（必要時於水浴加溫），用水稀釋至刻度。

取稀釋樣品1ml於　25ml帶塞刻度試管中，加1.2mol/L　鹽酸1ml,　加水15ml,0.2%　鋁試劑1ml，搖勻，加1.3mol/L醋酸銨溶液5ml,加水至25ml,　搖勻，放置15　分鐘，用530nm波長比色。

2.2　標準曲線

取標準鋁溶液0、0.25、0.5、0.75、1.0、1.25ml於25ml帶塞刻度試管中，鋁含量分別爲0、5、10、15、20、25μg，其餘操作同樣品管。繪製標準曲線。

3　計算

由標準曲線查出鋁含量爲Aμg。

Al(OH)3(mg/ml)=A×2.8918×50/1000

Al(PO4)(mg/ml)=A×4.52×50/1000

附註

邊緣製品以滴定法爲準。

14 遊離甲醛測定

1　試劑

1.1　復紅亞硫酸試劑

1.1.1　取鹼性復紅4.5g　於3000ml三角瓶中加蒸餾水1500ml,振搖或加溫使復紅全部溶解，待冷後，加10g　亞硫酸鈉，搖勻，靜置5～10分鐘，再加入40ml　3mol/L硫酸，搖勻，以橡皮塞塞緊瓶口，放置過夜，如有顏色，加骨炭5～10g迅速搖勻，以布氏漏斗快速抽濾。

1.1.2　試劑之SO2含量可控制在28～48mmol/L(SO2含量過多可通空氣驅除之，過少可通入SO2)。

SO2含量測定：吸取復紅亞硫酸試劑10ml於三角瓶內。加蒸餾水20ml，0.5%澱粉指示劑5ml，用0.1mol/L碘液滴定至呈淺藍色。

計算：SO2mmol/L=50×碘液ml數×碘液mmol/L

1.2　混合酸

量取蒸餾水783ml於燒杯內，緩緩注入42ml鹽酸，175ml硫酸，混勻。

1.3　標準甲醛溶液

爲0.005%(g/ml)甲醛溶液。

精確量取已標定的甲醛溶液Vml，於500ml容量瓶中，用蒸餾水稀釋至刻度，搖勻，臨用時10倍稀釋。

500×0.05

V=　─────────────

標定甲醛溶液含量%（g/ml）

2　操作

2.1　樣品

精確量取樣品1ml，用蒸餾水稀釋至甲醛含量在0.003%(g/ml)左右。取稀釋液2ml於50ml比色管中加蒸餾水到5ml，加10ml復紅試劑，10ml混合酸，搖勻，在25℃放置3小時，用590nm波長比色。

2.2　標準曲線

精確量取0.005%(g/ml)標準甲醛溶液0、0.5、1.0、1.5、2.0ml，分別置於50ml比色管中，加蒸餾水至總體積爲5ml，其餘操作同樣品。可得一標準曲線。

3　計算

從標準曲線查出樣品相當標準甲醛溶液之ml數A。

樣品遊離甲醛含量%（g/ml）=A×0.005×稀釋倍數

附註

1.標準液和樣品與復紅試劑的顯色時間，有時不一致，測定時，顯色慢者應酌情早加復紅試劑。

2.樣品中如含有酚紅，標準管中應予以校正。

3.可做限度測定。

15 苯酚含量測定

1　試劑

1.1　0.02mol/L溴液

取0.56g溴酸鉀，加3g溴化鉀，加蒸餾水溶解成1000ml。

1.225%碘化鉀溶液

取碘化鉀25g，加蒸餾水溶解成100ml。

1.3　標準0.02mol/L硫代硫酸鈉溶液

取標準0.1mol/L硫代硫酸鈉溶液準確稀釋5倍。

1.46　mol/L鹽酸溶液

1.5　澱粉指示劑

取可溶性澱粉0.5g，加蒸餾水5ml，攪勻後，緩緩傾入100ml的沸水中，隨加隨攪拌，煮沸，至適成稀薄的半透明液，放置，俟沉澱，傾取上層清液（配製時可加適當的防腐劑）。

1.60.17　mol/L硫酸鋅溶液

取硫酸鋅5g加蒸餾水溶解成100ml。

1.7　飽和氫氧化鋇溶液

取氫氧化鋇[Ba(OH)2·8H2O]5.6g，加蒸餾水溶解成100ml。

1.8　0.5%酚酞指示劑

取酚酞0.5g，加乙醇100ml,使溶解即得。

2　操作

2.1　菌苗類樣品

精確量取樣品1ml於碘瓶中，加入蒸餾水約50ml，精確加入0.02mol/L溴液15～25ml（樣品含苯酚量0.3%～0.5%加25ml，小於0.3%則加15ml），沿瓶壁加入鹽酸（6mol/L）10ml，搖勻，密塞，在暗處置30分鐘後，加25%碘化鉀2ml於碘瓶頸口，稍啓瓶塞，使流下，密塞，搖勻。以少量蒸餾水洗瓶頸，用標準0.02mol/L硫代硫酸鈉溶液滴定至溶液呈淺黃色，加澱粉指示劑約0.5ml，滴定至藍色消失。同時做空白試驗。

2.2　人胎盤血丙種球蛋白及疫苗類樣品

精密量取除蛋白（方法同蛋白含量測定鎢酸除蛋白法）後濾液5ml於碘瓶中，其餘操作同2.1項。

2.3　人胎盤組織液

精確量取樣品5ml於50ml容量瓶內，加適量蒸餾水，加0.5%酚酞指示劑2滴，加5%硫酸鋅溶液2ml，飽和氫氧化鋇溶液約2.5ml（加至溶液呈粉紅色），加蒸餾水稀釋至刻度，搖勻，放置30分鐘，過濾。精確量取濾液5ml於碘瓶中，其餘操作同2.1項。

3　計算

3.1　菌苗類樣品

苯酚含量%（g/ml）=（空白滴定數-樣品滴定數）×硫代硫酸鈉mol/L×1.569

3.2　人胎盤血丙種球蛋白（或人胎盤組織液）及疫苗類樣品

苯酚含量%（g/ml）=（空白滴定數-樣品滴定數）×硫代硫酸鈉mol/L×1.569×2

附註

1.蛋白類製品由於除蛋白後濾液仍含有小分子物質，對苯酚含量測定有干擾，使結果偏高，邊緣製品可用蒸餾法，取除蛋白濾液5ml於凱氏蒸餾器內，接受液爲0.02mol/L溴液15～25ml，蒸餾約20分鐘後其餘操作同上。

2.可做限度測定。

16 硫柳汞及硝酸汞苯含量測定

1　試劑

1.1　0.05%雙硫腙濃溶液

稱取純淨雙硫腙50mg，溶於100ml氯仿中，保存於冷暗處。

1.2　0.00125%雙硫腙滴定液

臨用時取0.05%雙硫腙濃溶液2.5ml，用四氯化碳稀釋至100ml。

1.3　濃硫酸

1.48.0mol/L硝酸溶液

1.5　20%鹽酸羥胺溶液

1.6　標準汞濃溶液

精確稱取於H2SO4乾燥器幹至恆重的氯化高汞（HgCl2分析純）0.1354g，用0.5mol/L　H2SO4溶解並準確稀釋至100ml，爲1mg汞/ml溶液。

1.7　標準汞溶液（50μg汞/ml）

精確量取標準汞濃溶液5ml，用0.5mol/L　H2SO4準確稀釋至100ml。

2　操作

2.1　消化

精確量取樣品（含汞約50μg）於150ml圓底磨口燒瓶（附長40cm迴流管）中，加濃硫酸2ml，5.5mol/L硝酸0.5ml，電爐上加熱迴流15分鐘（或於3×24cm試管中，加蓋，於85～　90℃水浴加熱1小時），冷卻後加蒸餾水40ml，加20%鹽酸羥胺5ml。

2.2　滴定

將上述樣品用40ml水分數次沖洗入125ml分液漏斗中，用0.00125%雙硫腙滴定液滴定，開始時每次可加入2ml左右，以後逐漸減少，至每次0.5ml，最後還可少至0.2ml。每次加入滴定液後，振搖10秒鐘，靜置分層，棄去四氯化碳層，繼續滴定，直至雙硫腙液的綠色不變，即爲終點。

抗毒素及丙種球蛋白樣品用水浴消化法滴定時會出現少量絮狀物，但不影響結果。

2.3　雙硫腙滴定液的標化

精確量取標準汞溶液1ml於125ml分液漏斗中，加濃硫酸2ml，加蒸餾水80ml，20%鹽酸羥胺5ml，用雙硫腙滴定液滴定，操作同上。

3　計算

0.050×2.04    100

硫柳汞含量%（g/ml）=樣品滴定數×────────    × ────────

                           標準汞液滴定數　 樣品ml數×1000

                              0.050×1.58    100

硫酸汞苯含量%（g/ml）=樣品滴定數×────────   ×  ────────

                              標準汞液滴定數　樣品ml數×1000

附註

可做限度測定

17 氯仿含量測定

1　試劑

1.1　乙醚

不應含過氧化物，否則應加硫酸亞鐵蒸餾。

1.2　20%氫氧化鈉溶液

取氫氧化鈉100g，加蒸餾水至500ml。

1.3　鹼性吡啶

20%氫氧化鈉溶液2份，加吡澱5份，振搖至呈礆性，放置分層，取上層液（此液需臨時配製，如顯紅色，吡啶需重蒸餾）。

1.4　95%乙醇

1.5　標準氯仿液

精密量取氯仿1ml於100ml容量瓶中，用乙醇稀釋至刻度，爲1%氯仿溶液。臨用前用蒸餾水準確稀釋10倍，爲0.1%(ml/ml)氯仿標準液。

2　操作

2.1　樣品

精確量取樣品1ml加蒸餾水4ml。精確量取樣品稀釋液0.5ml於玻塞試管中，加乙醚18ml，猛烈振搖3分鐘，靜置。於刻度玻塞試管中加5ml鹼性吡啶。加5ml乙醚提取液，混勻，置80℃水浴中加熱8分鐘，取出後用水冷卻，加蒸餾水至12ml，充分振搖，靜置分層，傾去上層液，用綠色濾光片比色。

2.2　標準曲線

精確量取0.1%氯仿標準液0.1、0.2、0.3、0.4、0.5ml，各管加蒸餾水至0.5ml，其餘操作同樣品，可得一標準曲線。

3　計算

由標準曲線查得樣品稀釋液相當標準氯仿液之ml數A。

樣品氯仿含量=A%（ml/ml）

附註

1.配製鹼性吡啶的氫氧化鈉須不含碳酸鈉，否則有混濁現象。

2.可做限度測定

18 費休（K.Fischer）氏水分測定法

1　試劑

1.1　無水吡啶

取吡啶200ml，置乾燥的蒸餾瓶中，加苯40ml，加熱蒸餾，收集114～116℃蒸餾出的吡啶，含水量應在0.1%以下。

1.2　無水甲醇

取甲醇1000ml，於乾燥蒸餾瓶中，加金屬鎂約15g與二氯化汞0.4g（或碘0.5g）迴流2～4小時，然後蒸餾（蒸餾儀器均需乾燥），收集64～65℃蒸餾出的甲醇，含水量應在0.05%以下。

1.3　二氧化硫

工業用，如無二氧化硫可用硫酸及亞硫酸鈉配製。

Na2SO3+H2SO4→Na2SO4+H2SO3

H2SO3→H2O+SO2

按此反應根據SO2之需要量計算亞硫酸鈉及硫酸之用量，將亞硫酸鈉置於瓶中，加少量水，緩緩加入硫酸，將生成之二氧化硫通過濃硫酸洗氣瓶，再通入費休氏試劑瓶中。

1.4　費休氏試劑

取乾燥的1000ml玻璃容器，加入碘42.33g與無水吡啶133.3ml，加塞，振搖至碘全部溶解後，加無水甲醇333.3ml，稱定重量，將此瓶置冰浴中，用密閉裝置導入經濃硫酸洗氣瓶脫水的二氧化硫直至重量增加32g爲止，密封避光保存。

1.5　標準水的製備與標化

1.5.1　製備

於乾燥無水的50ml容量瓶中，精密稱取0.4g左右雙蒸水，用無水甲醇稀釋至刻度，密封保存。

1.5.2　標化

精密量取標準水1ml與製備標準水用的無水甲醇5ml分別置於乾燥帶塞的玻瓶中，用費休氏試劑滴定至溶液呈棕黃色。

1.5.3　計算

稱取水重爲Amg。

1ml標準水所需費休氏試劑爲Bml。

5ml無水甲醇所需費休氏試劑爲Cml。

每ml費休氏試劑相當於水的mg數爲N=A/50　/　B-C/5

1ml標準水之含水量（mg）=N×B

2　操作

2.1　精密稱取乾燥製品0.1～0.5g於乾燥帶塞的玻瓶中，加無水甲醇5ml（按取樣量情況可酌情減少甲醇加量），不斷振搖，用費休氏試劑滴定至棕黃色，經振搖1分鐘不退色，即爲終點。同時取無水甲醇5ml作空白試驗。

2.2　費休氏試劑標化

精密量取標準水1ml於乾燥帶塞的玻瓶中，用費休氏試劑滴定至終點。

1ml標準水含水量（mg）
費休氏試劑效價N=　────────────
費休氏試劑滴定數

3　計算

（樣品滴定數-空白滴定數）×N   1
樣品水分含量%（g/g）=　────────────────      × ──
樣品重量        　   10

附註

1．配製試劑及測定樣品用的全部儀器均應乾燥至無水。

2．布氏菌病活菌苗及鼠疫活菌苗等製品能在費休氏試劑中溶解，可不用加無水甲醇提取。

3．空氣中溼度大，對水分測定有影響，取樣時應備有防溼裝置。相對溼度應30%以下。

4．有條件可採用卡氏水分測定儀測定。

5．如樣品中含有干擾物質，可採用五氧化二磷真空低溫乾燥法測定。

5.1　試劑

五氧化二磷（工業用）。

5.2　操作

取製品0.2～1.0g置於已乾燥至恆重的稱量瓶中，加蓋，精確稱定重量（稱量瓶中樣品厚度應在5mm以下），放入五氧化二磷乾燥器中，打開瓶蓋，於60℃將乾燥器抽真空至133Pa以下，乾燥至恆重。乾燥完畢應緩慢通入經濃硫酸脫水的乾燥空氣。

5．3　計算

樣品水分含量%（g/g）=乾燥失重/樣品重量×100

19 人白蛋白吸收度測定

1　儀器

1．1　分光亮度計（有403nm波長）。

1．2　徑長1cm的吸收池。

2　操作

精確量取樣品1.0ml，用蒸餾水或0.15mol/L氯化鈉準確稀釋至1%蛋白質溶液，置吸收池中，在光路1cm，波長403nm處用分光亮度計測定。

20 人白蛋白殘留鋁離子會計師測定（鋁試劑法）

1　試劑

1.1　鹽酸（1∶9）

10ml濃鹽酸加90ml蒸餾水。

1.2　0.2%鋁試劑溶液

0.2g鋁試劑加100ml蒸餾水溶解。

1.3　10%醋酸銨溶液

稱取10g醋酸銨（AR），加蒸餾水溶解並稀釋至100ml。

1.4　準鋁溶液（10μg鋁/ml）

精密稱取明礬[KAl（SO4）2·12H2O]（AR，無風化）0.3518g，加1.5mol/l　HCl8ml，加蒸餾水到500ml，爲40μg鋁/ml的標準濃溶液。臨用時精確量取2.5ml標準鋁濃溶液於10ml容量瓶，用蒸餾水稀釋至刻度，爲10μg鋁/ml標準液。

1.5　4mol　/L　NaOH溶液

稱取40g　NaOH(A.R)，加蒸餾水溶解並稀釋至250ml。

1.60.5mol　/L　NaOH溶液

取50ml　4mol　/L　NaOH加蒸餾水至400ml。

1.70.1mol　/L　HCl溶液

1ml濃HCl（A.R）加蒸餾水至120ml。

取溴麝香草酚藍0.1g,加0.05mol/L　NaOH3.2ml,溶解，再加水衡稀釋至200m。

2　操作

2.1樣品

精密量取1ml樣品於凱氏消化瓶內，加1ml濃H2SO4於電爐上消化。從濃的白煙生成到白煙基本消除，再繼續消化15分鐘，稍冷，向消化瓶中另入適量H2O2，於電爐上繼續消化至無氣泡生成，消化液呈無色透明。待冷後，用4mol/LNaOH中和消化液（10%白蛋白加5ml4mol/LNaOH）。然後將消化液轉移至10ml容量瓶中，並用蒸餾水稀釋至刻度。

取2ml稀釋液於25ml帶塞比色管中（取2管）。另取2ml稀釋液於50ml三角燒瓶中，向三解燒瓶中加2滴BTB指示劑，如變藍，用0.1mol/LHCl滴定至黃綠色；如爲黃色就用0.5mol/LNaOH滴定至黃綠色或淺藍色。用此方法將2ml樣品或對照稀釋液的pH值調至5.5~8.5，按此量將比色管內的稀釋液pH值調至5.5~8.5。加1mlHCl(1∶9)，加蒸餾水使其總體積不超過17ml，加0.2%鋁試劑1ml、10%醋酸銨溶液5ml，加蒸餾水至25ml。加塞搖勻。放置20分鐘後，用530nm波長測其吸收度（OD值）。同時做空白對照，用1ml蒸餾水代替1ml樣品，其餘操作同樣品。

2.2　標準曲線

精密量取標準鋁溶液（10μg鋁/ml）0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0ml於25ml帶塞比色管中，鋁含量分別爲0、2、4、6、8、10μg，從加1mlHCl（1∶9）起同樣品管。

3　計算

3.1　由標準曲線查出，或從標準計算出的直線迴歸方程中求出對照管和樣品管的鋁含量（A）。

3.2　根據中和用去的鹼量計算出2ml樣品和對照稀釋液中含4mol/LNaOH的ml數。

3.3　根據2ml對照稀釋液含的4mol/l　NaOH量和含鋁量，計算出每ml4mol/l　NaOH含鋁量。

3.4　根據每ml4mol/l　NaOH含鋁量和2ml樣品稀釋液中含4mol/l　NaOH的ml數，計算出2ml樣品稀釋液中，中和用的4mol/l　NaOH含鋁量（B）。

3.5　計算樣品中含鋁量

樣品中含鋁量（μg/g蛋白）=[（A－B）÷2×10]÷蛋白含量（g/ml）

附註

1．鋁試劑不僅能與某些金屬離子形成有色的絡合物，同時也會由於溶液中H+濃度的改變而產生顏色的變化。因此測定時，要嚴格控制溶液的pH值在5.0左右，樣品和標準的pH值一致。

2．鋁試劑避光保存。

21 人白蛋白（或丙種球蛋白）純度測定

（醋酸纖維素薄膜電泳法）

1試劑

1.1　巴比妥緩衝液（Ph8.6）

取巴比妥2.76g，巴比妥鈉15.45g，加蒸餾水溶解成1000ml。

1.20.5%氨基黑染色液

取氨基黑10B0.5g，溶於甲醇50ml、冰醋酸10ml及蒸餾水40ml的混合液中。

1.3漂洗液

取乙醇45ml，冰醋酸5ml及蒸餾水50ml，混勻。

1.40.2mol　/L氫氧化鈉

取8g氫氧化鈉，加蒸餾水溶解成1000ml。

1.5透明液

取冰醋酸25ml，加無水乙醇75ml，混勻。

2　操作

2.1電泳

將膜條（2×8cm）粗糙面向下，浸入巴比妥緩衝液中，待完全浸透，取出用濾紙吸去多餘的緩衝液，將膜條粗糙面向上，加於電泳支架上的濾紙橋上（或橋下），於膜上距負極端2cm處，直線狀滴加蛋白質含量約5%的樣品2～3μl，通電，電流控制在0.4~0.6mA/cm[總電流量=生產要膜的寬度（cm）×膜條數]，同時取新鮮人血清作對照，電泳時間以白蛋白與丙種球蛋白之間的電泳展開距離達3～4cm爲宜。

2.2　染色

電泳完畢，將膜條取下浸於染色液中，2～3分鐘後，用漂洗液反覆漂洗至底色完全脫淨。

2.3　透明

將漂淨並完全乾後的膜條浸於透明液至全部浸透爲止，取出平鋪於潔淨的玻璃板上，幹後即成透明薄膜，可供掃描法測定樣品純度和作爲標本長期保存用。

2.4　純度測定

2.4.1　洗脫法：將漂洗淨的膜條用濾紙吸乾，與正常人血清的電泳圖譜作對照，剪下白（或丙種球蛋白）帶A及其他雜蛋白質區帶B，分別浸於5ml0.2mol/L氫氧化鈉溶液中，振搖數次，至色澤完全浸出後，於620nm波長下測其OD值，以相同條件下，無蛋白質部分的膜條（其長度分別同A及B）作空白對照。

樣品中白蛋白（或丙種球蛋白）含量%=A的OD值－A空白的OD值/（A的OD值－A空白的OD值）+（B的OD值－B空白的OD值）×100%

2.4.2　掃描法：將乾燥的樣品醋酸纖維素薄膜電泳圖譜放入自動光密度掃描儀，通過反射（未透明薄膜）或透射（已透明薄膜）方式測定各蛋白質電泳區帶的OD值，根據儀器性能，可自動或手工方法計算出樣品白蛋白（或丙種球蛋白）的百分含量。

附註

用掃描法測定白蛋白（或丙種球蛋白）純度時，可採用麗春紅染色法，其染色液及漂洗液配方如下：

0.2%紅染色液：

取麗春紅0.2g，磺基水楊酸3g及三氯醋酸3g，用蒸餾水溶解並稀釋至100ml。

漂洗液：

取冰醋酸3ml，用蒸餾水稀釋至100ml。

22 殘留聚乙二醇（PEG）含量測定

1試劑

1.1　PEG（MW4000或6000）。

1.20.5mol　/L高氯酸（HClO4）溶液。

1.3　5%BaCl2溶液。

1.40.1mol　/L碘溶液。

2　操作

2.1　取1ml樣品，在靈敏度允許的範圍內，先將樣品稀釋到蛋白質濃度≤1%，加入5.0ml　0.5mol　/L高氯酸溶液，15分鐘後，用4000r/min，離心10分鐘，取上清液（如蛋白濃度過高，上清混濁，則要過濾至清）。

2.2　PEG測定

於4ml上清液中加入1.0ml5%BaCl2和0.5ml的0.1mol/L碘溶液，反應15分鐘後，進行比色。記錄各樣品的A535值。

2.3　標準曲線的繪製

取≤1%蛋白質溶液，另入PEG合成10～80μg/ml　溶液。根據樣品的大致濃度，用去除蛋白質後溶液製劑作標準曲線。

2.4　根據樣品讀數，從標準曲線上查出PEG含量。

3　計算

樣品中PCG濃度%（g/ml）=樣品稀釋倍數×查得標準曲線相應的PEG濃度

附註

1.整個比色過程應在試劑加入以後的15～45分鐘內完成，否則將要影響結果。

2.本方法的靈敏度隨被測定PEG的分子量的增加而提高。

23 人血白蛋白多聚體含量及人血丙種球蛋白中lgG各組份測定（高壓液相凝膠柱色譜法）

1　儀器

1.1　高壓液相泵

1.2　高壓液相色譜柱：TSKG3000SW(直徑7.5mm,長60cm)。TSk　Guard　Column　SW（直徑7.5mm，長7.5cm）。

2　試劑

2.1　貯存液A：0.5mol　/L　NaH2PO4,pH4.8

稱39g　NaH2PQ4·2H2O，用超純水溶解，並稀釋至500ml。

2.2　貯存液B：0.5mol　/L　Na2HPO4

稱179.1g　Na2HPO4·12H2O，用超純水溶解，並稀釋至1000ml。

2.3　工作液C：0.2mol　/L　磷酸鹽緩衝液，Ph7.0（含1%異丙醇）

準確量取200ml貯存液A、420ml貯存液B、914.5ml超純水、15.5ml異丙醇，混勻，用0.45μm水溶性膜過濾並超聲脫氣。

3　樣品處理

用生理鹽水將樣品稀釋至4mg/ml，然後用0.45μm水溶性膜過濾。

4　操作

用工作液C以0.6ml/分鐘流速平衡高壓液相系統至基線平穩。取處理過的樣品25μl上柱，用工作液C以0.6ml/分鐘流速洗脫，同時在紫外檢測器280nm波長下記錄色譜圖及有關數據。記錄數據的時間爲60分鐘。

5　計算

5.1　人血白蛋白多聚體含量計算

用高壓液相系統的色譜工作站或積分儀對試驗結果進行數據處理，算出多聚體相對面積百分含量。再根據轉化公式換算成相對重量百分含量。

轉化公式*X（%）=Y－1.6504/1.6359

其中X爲凱氏定氮結果，Y爲高壓液相結果（如Y值小於1.6504，結果不用轉化成重量百分含量，但在試驗報告中需註明爲相對面積百分含量）。

5.2　人血丙種球蛋白中IgG各組份相對含量計算。

5.2.1IgG各組份峯的劃界。

圖譜中各峯的界限爲兩峯間最低點到基線的垂直線。

5.2.2IgG各組份相對含量計算。

用高壓液相系統的色譜工作站或積分儀對試驗結果進行數據處理，算出各組份相對百分含量。

*應根據各單位使用的HPLC儀器及層析柱型號，經試驗後得出轉化公式。

24 人血白蛋白中辛酸鈉含量測定（氣相色譜法）

1　試劑

1.1　氯仿（A.R）

1.2　辛酸（CP）標準液

用氯仿配成10mg/ml溶液。

1.3　庚酸（CP）內示液

用氯仿酸成10mg/ml溶液。

1.41.5mol/L高氯酸溶液

2　儀器

2.1　帶有積分儀及氫火焰檢測器的氣相色譜儀。

2.2　色譜柱

色譜柱爲內徑3mm，長2m的玻璃柱，內裝塗有10%聚乙二醇（20M）固定液的ChromsorbVV擔體。

2.3　儀器工作條件

氣化室溫度230℃，柱溫190℃，載氣（純氮）流速40ml/分鐘；樣品，標準液注入量爲2μl。

2.4　振盪器

3　操作

3.1　標準曲線的繪製

取1.2項的辛酸標準液各10、20、30、40及50μl，分別與30μl.3項的庚酸內標液和4ml的氯仿組成5個標準管，混合均勻後，在通風櫥中將氯仿揮發至幹，然後定量加入0.1ml氯仿溶解殘渣，上機測定。典型的色譜圖中內標庚酸的保留值爲9分鐘左右，辛酸的保留值爲13分鐘左右。分別以自動積分儀顯示的各管樣品的辛酸和內標庚酸的峯面積之比，對各管中所含辛酸加入量進行迴歸統計，也可得到迴歸方程。

3.2　樣品測定步驟

取已知蛋白濃度樣品，用蒸餾水稀釋至5%蛋白濃度，然後準確取0.5ml，加入庚酸內標液30μl，1.5mol　/L高氯酸0.2ml，在振盪器上混合均勻，然後加入氯仿4ml，加蓋，用振盪器劇烈混合1分鐘，2800r/min離心10分鐘。用濾紙卷條小心吸去上層水，再用吸管小心吸出氯仿層，移入10ml管子中，在通風櫥中待氯仿揮發至幹，精確加入0.1ml氯仿，溶解殘渣，上機測定。

4　計算

4.1　根據樣品測定時所得的辛酸與內標庚酸的峯面積比代入已得迴歸方程，即得辛酸絕對含量。

白蛋白中辛酸量（mmol　/g蛋白）=測得辛酸絕對量（μg）/144.22×0.5×樣品蛋白濃度×100

注：

1.辛酸量（mmol）相等於辛酸鈉量（mmol）。

2.辛酸分子量爲144.22。

25 F（ab）2含量測定

1　試劑

1.1　丙烯酰胺溶液

取丙烯酰胺14g，雙丙烯酰胺0.367g，加蒸餾水至50ml。

1.2　緩衝液

Ph7.2，0.2mol　/L　PB-0.2%SDS：取NaH2PO4·2H2O17.8g,Na2HPQ4·12H2O103g,SDS4g，加蒸餾水至2000ml。

1.3　樣品結合液

取10%SDS4ml,0.2mol/L　PB0.2ml，甘油10ml，加蒸餾水至20ml。

1.4　電極緩衝液

取上述1.2項緩衝液稀釋1倍。

1.5　固定液

取甲醇400ml，冰醋酸70ml，加蒸餾水至1000ml。

1.6　染色液

取考馬斯亮藍2.5g，溶於500ml甲醇中，加冰醋酸70ml，再加蒸餾水至1000ml。

1.7　脫色液

取冰醋酸70ml，甲醇50ml，加蒸餾水至1000ml。

1.8　乾燥液

取甘油30ml，甲醇200ml，加蒸餾水至1000ml。

2　操作

2.1　樣品處理

取一定蛋白質濃度的樣品0.1ml，加樣品結合液0.1ml，100℃翥沸1～2分鐘，或37℃2小時，冷卻。

2.2　凝膠板製備

按下列比例製備所需量凝膠溶液∶0.2mol　/L　PB∶丙烯酰胺溶液∶水∶1.5%過硫酸銨=2∶1∶0.8∶0.25。最後加1～2滴四甲基乙二胺（TEMED），混勻後立即將膠液加入電泳槽的玻璃板間，要避免產生氣泡。

2.3　加樣

於每一樣品孔內加入已經處理過的樣品25μg蛋白。

2.4　電泳

電泳條件爲每個樣品孔的電流恆定爲2～3mA。當溴酚藍電泳至底部時停止電泳。

2.5　固定

將電泳後的膠板放入固定液中，過夜。

2.6　染色及脫色

於染色液中染色1～2小時，然後置脫色液中進行脫色，直至底色成爲無色爲止。

2.7　乾燥保存

用適宜方法乾燥。

3　結果計算

將乾燥前或後的膠板用掃描儀於575nm或520nm處對每一樣品進行掃描，得出（或計算出）樣品中F（ab）2的百分含量。

26 莢膜多糖抗原分子大小測定（瓊聚糖4B柱層析法）

1　試劑

1.1　瓊聚糖4B凝膠。

1.20.2mol　/L　氯化鈉溶液，pH7.0洗脫液。

1.3　藍色葡聚糖2000（2～4mg）加維生素B12（0.2mg），加蒸餾水1ml溶解。

2　儀器

2.1　層析柱（1.5～1.6×100cm）。

2.2　206nm波長紫外監測儀。

2.3　部分收集器及試管。

2.4　凝膠和洗脫液儲瓶，適宜的控制裝置和記錄器。

3　操作

3.1　瓊聚糖4B凝膠的漂洗

取瓊聚糖4B凝膠約300ml，加0.2mol　/L　氯化鈉溶液500ml，充分攪拌，靜置1～2小時，傾去上層液體和懸浮於其中的細小顆粒，重複上述操作數次後至上層液體無細小顆粒，置真空罐內，抽去凝膠中的空氣。

3.2　裝柱

將洗好的瓊聚糖4B凝膠慢慢注入柱中，避免夾雜氣泡，裝至約90cm，調整流速爲10～12ml　/小時，流洗2天。

3.3　標定

空流體積（Vo）及柱牀總體積（Vi）

取藍色葡聚糖及維生素B12溶液1ml，加於已平衡的柱上，以0.2mol　/L　氯化鈉溶液流洗，用部分收集器收集各組分，流速爲10～12ml　/小時，每管2～4ml，同時於206nm波長下自動監測，記錄流洗液圖譜。第一峯爲藍色葡聚糖峯，計算由加樣起至第一峯峯頂的流洗液體積，即爲Vo。第二峯爲維生素B12峯，計算由加樣起至第二峯峯頂的流洗液體積，即爲Vi。

3.4　多糖抗原Kd值的測定

3.4.1　取約1ml樣品（含多糖抗原3～5mg，凍幹樣品可用1.2項溶液溶解）。加於已標定的瓊聚糖4B膠柱上，用0.2mol　/L　氯化鈉溶液流洗，流洗液用量爲柱牀總體積的1.5倍，每管收集2～4ml，同時於206nm波長下自動監測，記錄流洗液圖譜，由加樣起至多糖峯峯頂流洗體積爲Ve，計算分配係數（Kd）。

Kd=Ve―Vo/Vi―Vo

3.4.2Kd≤0.5多糖抗原回收率的計算

用求積儀分別計算Kd值0.5以前組分峯的面積除以所有組分峯的面積，即得Kd≤0.5多糖抗原回收率。

Kd≤0.5多糖回收率（%）=Kd0.5以前組分峯的面積/所有組分峯的總面積×100

注意：過柱操作在10～20℃下進行。

27 O－乙酰基含量測定

1　試劑

1.1　2mol　/L　鹽酸羥胺，冷處保存。

1.23.5mol　/L　氫氧化鈉。

1.3　4mol　/L　鹽酸

濃鹽酸（比重1.18）1份，加2份蒸餾水稀釋。

1.40.37mol　/L　三氯化鐵（FeCl3·6H2O），溶解於0.1mol　/L　鹽酸內。

1.50.001mol　/L　醋酸鈉（pH4.5）。

1.62.5mmol　/L　的氯化乙酰膽鹼液

精確稱取已乾燥至恆重的氯化乙酰膽鹼22.7mg，用0.001mol　/L　醋酸鈉液（pH4.5）溶解，移入50ml容量瓶中，用0.001mol　/L　醋酸鈉液稀釋至刻度。

2　操作

2.1　樣品

精確量取樣品1ml（含O-乙酰基0.5～2.5μmol）置於試管中，加2ml新鮮配製的鹼性羥胺液（等體積的2mol　/L　鹽酸羥胺與3.5mol　/L　氫氫化鈉混合，3小時內可用），搖勻，於室溫放置4分鐘，加1ml　4mol　/L　鹽酸，使pH爲1.2±0.2，搖勻，加1ml　0.37mol　/L　三氯化鐵，搖勻，於540nm比色，同時作一樣品空白，取樣品1ml於試管中，先加1ml　4mol　/L　鹽酸，後加2ml鹼性羥胺（即加酸與加鹼性羥胺的次序顛倒），加三氯化鐵等操作同上。

2.2　標準曲線

精確量取氯化乙酰膽鹼（或溴化乙酰膽鹼）標準液0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0ml，分別置於試管中，加蒸餾水補至1ml，其餘操作同樣品，同時作標準空白，即作與上相同的系列標準管，只是加酸與加鹼性羥胺的次序顛倒，其他操作均同。

3　計算

標準管比色讀數分別減去各自空白比色讀數，然後畫出標準曲線。樣品比色讀數減去其空白讀數，再從標準曲線查出品相當標準液之ml數A。

樣品O-乙酰基含量（mmol　/L）=A×2.5

附註

也可採用WHO規程法，但應相應提高樣品用量。

28 磷含量測定

1　試劑

1.1　高氯酸。

1.2　濃硫酸。

1.3　30%過氧化氫。

1.40.04mol　/L　鉬酸銨

取鉬酸銨5g，加蒸餾水溶解成100ml。

1.5　還原劑

稱取亞硫酸氫鈉6g，亞硫酸鈉1.2g，1-氨基-2-茶酚磺酸0.1g，加蒸餾水溶解成50ml，置棕色瓶中保存，一週內可用。

1.6　磷標準液

精確稱取已乾燥至恆重的磷酸二氫鉀439.3mg，加蒸餾水溶解，移入100ml容量瓶中，稀釋至刻度，爲貯備液（1mg磷/ml）。精確量取貯備液2ml，於100ml容量瓶中，加蒸餾水稀釋至刻度，爲磷標準液（20μg/ml）。

2　操作

2.1　樣品

A羣腦膜炎球菌多糖菌苗成品測磷至少取三支安瓿溶解後混合使用。

精確量取一定體積樣品（含磷4～20μg）於刻度試管中，加4滴濃硫酸（約0.08ml），加熱至炭化，再加2滴高氯酸（約0.06ml），消化至無色澄清，必要時可加1～2滴30%過氧化氫，但最後必須將過氧化氫除盡。消化後稍置片刻，趁熱另2ml蒸餾水（如冷卻後加水，需再加熱），加0.4ml0.04mol　/L　鉬酸銨，混勻，加0.2ml還原劑，混勻，另蒸餾水至6ml，15～20分鐘後，於820nm波長比色。

2.2　標準曲線

精確量取磷標準液（20μg　/ml）0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0ml，分別置於刻度試管中，補加蒸餾水至1ml，其餘操作同樣品，可得一標準曲線。

3　計算

從標準曲線查出樣品相當標準液之ml數A。

樣品磷含量（μg　/ml）=A×20/樣品ml數

核酸含量測定

取含A羣腦膜炎多糖抗原5±1mg　/ml溶液，採用紫外分光法於260nm波長測定OD值，按E1%1cm=200計算核酸含量。

核糖含量測定

1　試劑

1.1　0.31mol　/L　三氯醋酸

稱取三氯醋酸5g，加蒸餾水溶解成100ml。

1.2　0.61　mol　/L三氯醋酸

稱取三氯醋酸10g，加蒸餾水溶解成100ml。

1.3　0.019mol　/L　三氯化鐵-鹽酸溶液

稱取三氯化鐵（FeCl3·6H2O）0.5g，加濃鹽酸溶解成500ml，可長期使用。

1.4　1%二羥基甲苯（苔黑酚）

稱取二羥基甲苯1g，溶於0.019mol　/L　三氯化鐵-鹽酸溶液中，臨用新配。

1.5　標準核糖溶液

精密稱取D核糖20mg，溶於0.31mol　/L　三氯醋酸，準確稀釋至100ml爲200μg　/ml核糖標準貯備液。精密吸取貯備液2.5ml於25ml容量瓶中，用0.31mol　/L　三氯醋酸稀釋至刻度，即爲標準核糖溶液（20μg/ml）。

2　操作

精密量取轉移因子待檢品1ml於試管中，另0.61mol　/L三氯醋酸1ml，置沸水浴水解15分鐘，再吸取水解液0.4ml，加0.31ml/L三氯醋酸1.6ml,及1%二羥基甲苯2ml,混勻,再置沸水浴中加熱30分鐘,冷卻至室溫,在650nm波長測定OD值,同時準確吸取核糖標準液1ml,加0.31mol/L三氯醋酸1ml,混勻,其餘操作同樣品,並做空白對照。

3　計算

樣品OD值

核糖含量(μg/ml)=　─────×20×5

標準OD值